其实正确采集痰标本的时间的问题并不复杂，但是又很多的朋友都不太了解痰培养三个标本取痰时间，因此呢，今天小编就来为大家分享正确采集痰标本的时间的一些知识，希望可以帮助到大家，下面我们一起来看看这个问题的分析吧！
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一、临床检验标本的采集知识
血标本的采集是临床上护士每天都在做的`事情，采血管种类繁多，我们先要认识什么管应该采什么血，认识清楚了才能正确采集。(如下图)
知道什么管采什么血，拿到试管后，对于多管采集，我们要遵循如下顺序并且要注意掌握好采血时间，注意调整患者的情绪和状态，严格规范操作，严防溶血，防止凝血(采血顺序)：血培养(需氧→厌氧)→黄管→蓝管→绿管→紫管→黑管
在采血之前，责任护士应该交待患者饮食的注意事项：如血液分析检查，空腹、进食不影响结果;肝功、肾功、免疫类项目等严则上以空腹为好，若为病情所需，也可随时抽血检查;血脂检查应在检查三天前，禁服一切降脂药物和进食大量的高脂蛋白食物，饮食以素食为主，检查时必须空腹采血;空腹血糖应在进食后8小时以上采血;检查餐后血糖，应在进食后准确2小时采血。
在静脉采血的过程中，采血护士还应该注意当患者一侧手臂输液、输血时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度;止血带使用应少于半分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变;若局部出现淤血，早期冷敷，24小时后用手巾热敷，可促进吸收，采血若是失败，确定针头没有在静脉内，应立即拔针，重新更换针头另选静脉进行采血，不能来回多次进针或退针。采完血，更好采用无痛拔针，拔针时棉签不按压血管，在针类离开皮肤的瞬间迅速沿血管方向同时按压皮肤及血管穿刺针眼，使疼痛降低到更低点。标本若是不能及时送检，就存放在4—6℃冰箱保存。
尿标本的采集一般采用晨尿，即清晨起床、未进食和运动之前排出的尿液，一般需留取10ml,尿标本在2小时内送检。
中段尿是指在排尿过程中，弃去前后时段排出的尿液，以无菌容器收集中间时段的尿液，留尿前应先清洗外阴，女性应清洗尿道旁的 *** 口，男性应清洗头;再用0.5%碘伏清毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂等清洗尿道口，在患者膀胱充盈时留取。
尿三杯试验留取 *** 是留取前段、中段、末段尿液，分装于三个尿杯中。
24小时尿先排尽早上7点的尿液后开始至第二天早上7点的全部尿液，容量更好大于4L，用清洁有盖的容器。留好的尿液中需要加防腐剂，如浓盐酸加入24小时尿液中5-10 ml;用于固定尿中有机成分的甲醛，需要加1-2 ml;保持尿中成分不变的甲苯则需加2 ml。
粪便标本的采集需要注意的是隐血标本应在3日前禁食肉类及动物性食物，并禁服铁剂及维生素C等药物。采集 *** 有自然排便采集法，采集有脓血、粘液部份的粪便约黄豆大小，或稀水样便则应取约2 ml，置于容器中送检。
检查蛲虫卵需要用透明塑料薄膜于半夜12点或早晨排便前，于 *** 周围皱壁处拭取标本，并立即送检。
标本采集后应在1-2小时内送检，否则可因PH及消化酶等影响导致有型成分破坏分解。
痰标本的采集，若是能自理的患者采用自然咳痰法，痰咳困难者可先雾化吸入10%NACL溶液使痰易咳出。无法咳痰或不合作者可从下而上叩击病人背部，帮助咳痰，用集痰器收集。
以上都是临床上常见的标本采集，采集完标本后，护士仍应执行严格的查对制度，详细核对病人信息与条形码是否一致，无误后方可送检。对于急查标本应在30分钟内送检，普通标本应在1小时内送检。检验结果出来后，对危急值，当班护士应及时汇报值班医生处理，以免耽误病情。
二、基础护理学操作——痰标本采集法
根据医嘱采集患者痰标本，进行临床检验，为诊断和治疗提供依据。
（1）询问、了解患者身体状况，向患者解释，取得配合。
（2）观察患者口腔黏膜有无异常和咽部情况。
（2）指导或者帮助患者按要求排痰。
（3）为人工辅助呼吸者吸痰时，要带无菌手套，考试大网站收集将痰液收集器连接在负压吸引器上，正确留取标本。
（4）注明标本留取时间，并按照要求送检。
（1）告知患者检查目的、采集 *** 、采集时间。
（2）指导患者正确留取痰标本，告知患者留取痰液前要先漱口，然后深吸气，用力咳出之一口痰，留于容器中。
（3）告知患者不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。
1.护士在采集过程中要注意根据检查目的选择正确的容器。
2.患者做痰培养及痰找瘤细胞检查时，应及时送检。
3.留取24小时痰液时，要注明起止时间。
三、痰培养标本怎么留才正确
1、以清晨的时间作为留取痰时间。
2、为了减少口腔常居菌的污染，先用清水漱口后再从气管深部咳出痰液（并非唾液）吐入无菌容器内。
3、用气管穿刺法来进行对厌氧菌的培养。
4、痰液留取应立即送去检查，避免污染。
5、当检查结核分枝杆菌时，为了提高阳性率应收集24小时内各时间段的痰液。
（1）由于咳痰标本常受到口咽部定居细菌的污染，分离得到的细菌往往不能真正代表下呼吸道感染的病原菌，应密切结合临床进行分析，必要时进行多次培养。
（2）由于痰的非均质性，定量培养之前需先将标本液化和匀化。
（3）采样前使用过抗菌药物者，检测到的感染菌浓度降低，可导致假阴性结果。
该项检查试用于各种不明原因的呼吸道感染疾病。
痰液培养出致病菌后，进行菌种鉴定，可得出相应的病原菌。常见的致病菌有：
（1）革兰阳性菌：肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、结核分枝杆菌、放线菌、奴卡菌、厌氧球菌、白喉棒状杆菌等。
（2）革兰阴性菌：卡他布兰汉菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎克雷伯菌、大肠杆菌、假单胞菌、军团菌等。
（3）培养分离出一些真菌，有助于真菌性感染的诊断。
（4）做病毒分离：可分离到某些病毒，如分离到禽流感病毒H5N1，则可诊断为禽流感。
痰鸣音，湿咳，结核中毒，无活动性结核病灶，平卧呼吸困难，痰黏稠或脓性可有腥臭味，痰呈白色黏稠胶冻状，隐球菌囊膜多糖堆积，隐球菌感染，湿啰音等。
四、如何正确留取痰培养标本
1、以清晨的时间作为留取痰时间。
2、为了减少口腔常居菌的污染，先用清水漱口后再从气管深部咳出痰液（并非唾液）吐入无菌容器内。
3、用气管穿刺法来进行对厌氧菌的培养。
4、痰液留取应立即送去检查，避免污染。
5、当检查结核分枝杆菌时，为了提高阳性率应收集24小时内各时间段的痰液。
1、由于咳痰标本常受到口咽部定居细菌的污染，分离得到的细菌往往不能真正代表下呼吸道感染的病原菌，应密切结合临床进行分析，必要时进行多次培养。
2、痰液的细胞学筛选：将痰液直接涂片后光学显微镜检查，每低倍视野鳞状上皮细胞小于10个，白细胞大于25个，或鳞状上皮细胞：白细胞< 1：2.5，可认为痰液来源于下呼吸道，即为合格痰标本。
3、由于痰的非均质性，定量培养之前需先将标本液化和匀化。
4、采样前使用过抗菌药物者，检测到的感染菌浓度降低，可导致假阴性结果。
五、微生物检验标本采集规范
正确采集、运送、保存及处理微生物检验标本，对于保证微生物检验质量至关要，为了准确检出病原菌，避免漏检及误诊，临床医护人员及实验室工作人员应掌握微生物检验标本采集、运送、保存及处理原则。下面是我为大家带来的关于微生物检验标本采集规范的知识，欢迎阅读。
1、早期采集：采集时间更好是病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物(俗称消炎药)之前采集，确保病原菌的检出;
2、无菌操作：采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本，采集的标本盛于无菌容器内送检。盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率;
3、适量标本：标本量过少可能导致假阴性结果。
(1)送检指征：凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性，黏稠或血性，并伴有胸痛，气急，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，应采集痰液或下呼吸道标本。
(2)标本采集时间：a、以晨痰为好，患者清晨用凉开水反复漱口后用力自气管咳出之一口痰，将痰采集于无菌容器中尽快送检。b、在应用抗菌药物之前采集标本。
二、脓液及创伤感染分泌物标本采集
(1)送检指征：红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。
(2)采集 *** ：a、开放性脓肿标本：包括眼、耳、扁桃体、术后切口感染等脓性分泌物。首先用无菌生理盐水清洗病灶表面的污染杂菌，然后采取靠近组织部分脓液及病灶深部的分泌物立即送检。b、闭锁性脓肿标本：指有完整脓壁与体腔、与外界不相通的脓肿。闭锁脓肿应采集渗出物和脓肿壁标本。注意不主张用拭子采集标本，对患者病灶局部及皮肤或黏膜消毒后，用无菌注射器将脓肿内容物吸出，然后切开脓肿，引流采集脓汁(大于1ml)用于检验。
(3)送检时间：标本采集后应在2小时内(室温放置)送至细菌室。一般在患者使用抗菌药物之前或停止用药后1-2日采集。
(1)送检指征：尿路感染、肾结核、泌尿系结石、肉眼脓尿或血尿，尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性，不明原因发热，尿道口有脓性分泌物等。
(2)采集时间及 *** ：应选择在抗菌药物应用之前采集尿液，通常应采集晨起第1次尿液送检，确保尿液在膀胱内停留4小时以上。 *** 是患者留取标本的前一天晚上少饮水，晨起女性先用肥皂水清洗外 *** (男性翻转包皮，清洗尿道口)，再以无菌盐水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段，留取中段尿10-15ml于灭菌容器中，立即加盖送检。
(1)送检指征：腹泻、大便每日≥3次，粪便的形状异常，可为稀便、水样便、粘液便、脓血便及血便，可伴有恶心、呕吐、食欲不振、发热、腹痛及全身不适等。
(2)采集 *** ：自然排便后，挑取有脓血或黏液部位的粪便，液状粪便取絮状物盛于无菌的容器中送检。
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